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重組蛋白

點(diǎn)擊次數(shù):3049 發(fā)布時(shí)間:2011/11/20
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重組蛋白在宿主系統(tǒng)中高水平表達(dá)時(shí),無論是原核表達(dá)體系或真核表達(dá)體系甚至高等真核表達(dá)體系,都會形成包涵體[2]。主要因?yàn)樵谥亟M蛋白的表達(dá)過程中,缺乏某些蛋白質(zhì)折疊過程中需要的酶和輔助因子,或環(huán)境不適,無法形成正確的次級鍵等原因形成的[3]。

1、      表達(dá)量過高,研究發(fā)現(xiàn)在低表達(dá)時(shí)很少形成包涵體,表達(dá)量越高越容易形成包涵體。原因可能是合成速度太快,以至于沒有足夠的時(shí)間進(jìn)行折疊,二硫鍵不能正確配對,過多的蛋白間的非特異性結(jié)合,蛋白質(zhì)無法達(dá)到足夠的溶解度等。

2、      重組蛋白的氨基酸組成,一般說來含硫氨基酸越多越容易形成包涵體。

3、      所處的環(huán)境:發(fā)酵溫度高或胞內(nèi)pH接近蛋白的等電點(diǎn)時(shí)容易形成包涵體。

4、      是大腸桿菌的異源蛋白,由于缺少真核生物中翻譯后修飾所需酶類,致使中間體大量積累,容易形成包涵體沉淀。

5、      有報(bào)道認(rèn)為,豐富的培養(yǎng)基有利于活性蛋白質(zhì)的表達(dá),當(dāng)培養(yǎng)條件不佳時(shí),容易形成包涵體。

減少包涵體形成的策略

1、      降低重組菌的生長溫度,降低培養(yǎng)溫度是減少包涵體形成的zui常用的方法,較低的生長溫度降低了無活性聚集體形成的速率和疏水相互作用,從而可減少包涵體的形成[4]。

2、      添加可促進(jìn)質(zhì)可溶性表達(dá)的生長添加劑,培養(yǎng)E.coli時(shí)添加高濃度的多醇類、蔗糖或非代謝糖可以阻止分泌到周質(zhì)的蛋白質(zhì)聚集反應(yīng),在zui適濃度范圍內(nèi)添加這些添加劑不會影響細(xì)胞的生長、蛋白質(zhì)的合成或運(yùn)輸,其它促質(zhì)可溶性表達(dá)的生長添加劑還有乙醇(誘導(dǎo)熱休克蛋白的表達(dá))、低分子量的巰基或二硫化合物(影響細(xì)胞周質(zhì)的還原態(tài),從而影響二硫鍵的形成)和NaCl[5]。

3、      供給豐富的培養(yǎng)基,創(chuàng)造*培養(yǎng)條件,如供氧、pH等。

包涵體的分離及溶解

對于生物制藥工業(yè)來說,包涵體的形成也是有利的,不僅可獲得高表達(dá)、高純度的質(zhì),還可避免細(xì)胞水解酶對質(zhì)的破壞。由于包涵體是蛋白質(zhì)聚集而成的致密顆粒,分離的*步是對培養(yǎng)收集的細(xì)胞進(jìn)行破碎,比較有效的方法是高壓勻漿結(jié)合溶菌酶處理,然后5000~20000g離心,可使大部分包涵體沉淀,與可溶性蛋白分離,接著,包涵體沉淀需用去污劑(Triton X-100或脫氧膽酸鈉)和低濃度變性劑(2mol/L尿素或鹽酸胍等)洗滌除去脂類和膜蛋白,這一步很重要,否則會導(dǎo)致包涵體溶解和復(fù)性的過程中質(zhì)的降解.

包涵體的溶解必須用很強(qiáng)的變性劑,如8mol/L尿素、6~8mol/L鹽酸胍,通過離子間的相互作用破壞包涵體蛋白間的氫鍵而增溶蛋白。其中尿素的增溶效果稍差,異氰鹽酸胍zui強(qiáng);去污劑,如SDS[7],可以破壞蛋白內(nèi)的疏水鍵,可以增溶幾乎所有的蛋白,但由于無法*去除而不允許用在制藥行業(yè)中;酸,如70%甲酸,可以破壞蛋白的次級鍵從而增溶蛋白,這種方法只適合少數(shù)蛋白質(zhì)。對于含有半胱氨酸的蛋白,在增溶時(shí)應(yīng)加入還原劑(如DTT、GSH、β-ME)打開蛋白質(zhì)中所有二硫鍵,對于目標(biāo)蛋白沒有二硫鍵的有時(shí)也應(yīng)使用還原劑,為含二硫鍵的雜蛋白會影響包涵體的溶解,同時(shí)還應(yīng)加入金屬螯合劑,如EDTA或EGTA,用來螯合Cu2+、Fe3+等金屬離子與還原狀態(tài)的巰基發(fā)生氧化反應(yīng)。

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