本試劑盒僅供研究使用 檢測范圍：0.3 ng/ml, - 20 ng/ml, zui低檢測限：0.08 ng/ml, 特異性：本試劑盒可同時檢測天然或重組的人14-3-3蛋白，且與其他相關(guān)蛋白無交叉反應(yīng)。 有效期：6個月 預(yù)期應(yīng)用：ELISA法定量測定人血清、血漿、細胞培養(yǎng)上清或其它相關(guān)生物液體中14-3-3蛋白含量。 說明 l 試劑盒保存：-20℃（較長時間不用時）；2-8℃（頻繁使用時）。 l 濃洗滌液低溫保存會有鹽析出，稀釋時可在水浴中加溫助溶。 l 中、英文說明書可能會有不一致之處，請以英文說明書為準。 l 剛開啟的酶聯(lián)板孔中可能會含有少許水樣物質(zhì)，此為正?，F(xiàn)象，不會對實驗結(jié)果造成任何影響。 實驗原理 用純化的抗體包被微孔板，制成固相載體，往包被抗14-3-3抗體的微孔中依次加入標本或標準品、生物素化的抗14-3-3抗體、HRP標記的親和素，經(jīng)過*洗滌后用底物TMB顯色。TMB在過氧化物酶的催化下轉(zhuǎn)化成藍色，并在酸的作用下轉(zhuǎn)化成zui終的黃色。顏色的深淺和樣品中的14-3-3.呈正相關(guān)。用酶標儀在450nm波長下測定吸光度（OD值），計算樣品濃度。 試劑盒組成及試劑配制 1. 酶聯(lián)板（Assay plate ）： 一塊（96孔）。 2. 標準品（Standard）： 2瓶（凍干品）。 3. 樣品稀釋液（Sample Diluent）： 1×20ml/瓶。 4. 生物素標記抗體稀釋液（Biotin-antibody Diluent）： 1×10ml/瓶。 5. 辣根過氧化物酶標記親和素稀釋液（HRP-avidin Diluent）： 1×10ml/瓶。 6. 生物素標記抗體（Biotin-antibody）： 1×120μl/瓶（1：100）。 7. 辣根過氧化物酶標記親和素（HRP-avidin）： 1×120μl/瓶（1：100）。 8. 底物溶液（TMB Substrate）： 1×10ml/瓶。 9. 濃洗滌液（Wash Buffer）： 1×20ml/瓶，使用時每瓶用蒸餾水稀釋25倍。 10. 終止液（Stop Solution）： 1×10ml/瓶（2N H2SO4）。 需要而未提供的試劑和器材 1. 標準規(guī)格酶標儀 2. 高速離心機 3. 電熱恒溫培養(yǎng)箱 4. 干凈的試管和Eppendof管 5. 系列可調(diào)節(jié)移液器及吸頭，一次檢測樣品較多時，用多通道移液器 6. 蒸餾水，容量瓶等 標本的采集及保存 1. 血清：全血標本請于室溫放置2小時或4℃過夜后于1000 x g離心20分鐘，取上清即可檢測，或?qū)吮痉庞?/span>-20℃或-80℃保存，但應(yīng)避免反復(fù)凍融。 2. 血漿：可用EDTA或肝素作為抗凝劑，標本采集后30分鐘內(nèi)于2 - 8° C 1000 x g離心15分鐘，或將標本放于-20℃或-80℃保存，但應(yīng)避免反復(fù)凍融。 3. 細胞培養(yǎng)物上清或其它生物標本：1000 x g離心20分鐘，取上清即可檢測，或?qū)吮痉庞?/span>-20℃或-80℃保存，但應(yīng)避免反復(fù)凍融。 注：標本溶血會影響zui后檢測結(jié)果，因此溶血標本不宜進行此項檢測。 標本的稀釋原則： 首先通過文獻檢索的方式了解待測樣本的大致含量，確定適當?shù)南♂尡稊?shù)。只有稀釋至標準曲線的范圍內(nèi)，檢測的結(jié)果才是準確的。稀釋的過程中，應(yīng)做好詳細的記錄。zui后計算濃度時，稀釋了“N”倍，標本的濃度應(yīng)再乘以“N”。 標準品的稀釋原則：2瓶，每瓶臨用前以樣品稀釋液稀釋至1ml，蓋好后靜置10分鐘以上，然后反復(fù)顛倒/搓動以助溶解，其濃度為20 ng/ml,，做系列倍比稀釋后，分別稀釋20 ng/ml, 10 ng/ml, 5 ng/ml, 2.5 ng/ml, 1.2 ng/ml, 0.6 ng/ml, 0.3 ng/ml.，樣品稀釋液直接作為標準濃度0 ng/ml,，臨用前15分鐘內(nèi)配制。 如配制10 ng/ml,標準品：取0.5ml（不要少于0.5ml）20 ng/ml,的上述標準品加入含0.5ml樣品稀釋液的Eppendorf管中，混勻即可，其余濃度以此類推。 生物素標記抗體的稀釋原則： 臨用前以生物素標記抗體稀釋液稀釋，稀釋前根據(jù)預(yù)先計算好的每次實驗所需的總量配制（每孔100μl），實際配制時應(yīng)多配制0.1-0.2ml。如10μl生物素標記抗體加990μl生物素標記抗體稀釋液的比例配制，輕輕混勻，在使用前一小時內(nèi)配制。 辣根過氧化物酶標記親和素的稀釋原則： 臨用前以辣根過氧化物酶標記親和素稀釋液稀釋，稀釋前根據(jù)預(yù)先計算好的每次實驗所需的總量配制（每孔100μl），實際配制時應(yīng)多配制0.1-0.2ml。如10μl辣根過氧化物酶標記親和素加990μl辣根過氧化物酶標記親和素稀釋液的比例配制，輕輕混勻，在使用前一小時內(nèi)配制。 操作步驟 實驗開始前，請?zhí)崆芭渲煤盟性噭?，試劑或樣品稀釋時，均需混勻，混勻時盡量避免起泡。每次檢測都應(yīng)該做標準曲線。如樣品濃度過高時，用樣品稀釋液進行稀釋，以使樣品符合試劑盒的檢測范圍。 1. 加樣：分別設(shè)空白孔、標準孔、待測樣品孔?？瞻卓准訕悠废♂屢?/span>100μl，余孔分別加標準品或待測樣品100μl，注意不要有氣泡，加樣將樣品加于酶標板孔底部，盡量不觸及孔壁，輕輕晃動混勻，酶標板加上蓋或覆膜，37℃反應(yīng)120分鐘。 為保證實驗結(jié)果有效性，每次實驗請使用新的標準品溶液。 2. 棄去液體，甩干，不用洗滌。每孔加生物素標記抗體工作液 100μl（取1μl生物素標記抗體加99μl生物素標記抗體稀釋液的比例配制，輕輕混勻，在使用前一小時內(nèi)配制），37℃,60分鐘。 3. 溫育60分鐘后，棄去孔內(nèi)液體，甩干，洗板3次，每次浸泡1-2分鐘，200μl/每孔，甩干。 4. 每孔加辣根過氧化物酶標記親和素工作液（同生物素標記抗體工作液） 100μl，37℃，60分鐘。 5. 溫育60分鐘后，棄去孔內(nèi)液體，甩干，洗板5次，每次浸泡1-2分鐘，200μl/每孔，甩干。 6. 依序每孔加底物溶液90μl，37℃避光顯色（30分鐘內(nèi)，此時肉眼可見標準品的前3-4孔有明顯的梯度藍色，后3-4孔梯度不明顯，即可終止）。 7. 依序每孔加終止溶液50μl，終止反應(yīng)（此時藍色立轉(zhuǎn)黃色）。終止液的加入順序應(yīng)盡量與底物液的加入順序相同。為了保證實驗結(jié)果的準確性，底物反應(yīng)時間到后應(yīng)盡快加入終止液。 8. 用酶聯(lián)儀在450nm波長依序測量各孔的光密度（OD值）。在加終止液后15分鐘以內(nèi)進行檢測。 實驗備注 l 用戶在初次使用試劑盒時，應(yīng)將各種試劑管離心數(shù)分鐘，以便試劑集中到管底。 l 每次實驗留一孔作為空白調(diào)零孔，該孔不加任何試劑，只是zui后加底物溶液及2N H2SO4。測量時先用此孔調(diào)OD值至零。 l 為防止樣品蒸發(fā)，試驗時將反應(yīng)板放于鋪有濕布的密閉盒內(nèi)，酶標板加上蓋或覆膜。 l 未使用完的酶標板或者試劑，請于2-8℃保存。標準品、生物素標記抗體工作液、辣根過氧化物酶標記親和素工作液請依據(jù)所需的量配置使用。請勿重復(fù)使用已稀釋過的標準品、生物素標記抗體工作液、或辣根過氧化物酶標記親和素工作液。 l 建議檢測樣品時均設(shè)雙孔測定，以保證檢測結(jié)果的準確性。 洗板方法
手工洗板方法：吸去（不可觸及板壁）或甩掉酶標板內(nèi)的液體；在實驗臺上鋪墊幾層吸水紙，酶標板朝下用力拍幾次；將推薦的洗滌緩沖液至少0.3ml注入孔內(nèi)，浸泡1-2分鐘。根據(jù)需要，重復(fù)此過程數(shù)次。
自動洗板：如果有自動洗板機，應(yīng)在熟練使用后再用到正式實驗過程中。 計算 以標準物的濃度為橫坐標（對數(shù)坐標），OD值為縱坐標（普通坐標），在半對數(shù)坐標紙上繪出標準曲線，根據(jù)樣品的OD值由標準曲線查出相應(yīng)的濃度；再乘以稀釋倍數(shù)；或用標準物的濃度與OD值計算出標準曲線的直線回歸方程式，將樣品的OD值代入方程式，計算出樣品濃度，再乘以稀釋倍數(shù)，即為樣品的實際濃度。 注意事項 l 底物請避光保存。 l 當混合蛋白溶液時應(yīng)盡量輕緩，避免起泡。 l 請每次測定的同時做標準曲線，做復(fù)孔。 l 洗滌過程非常重要，不充分的洗滌易造成假陽性。 l 不要用其它生產(chǎn)廠家的試劑替換試劑盒中的試劑。 l 一次加樣時間控制在5分鐘內(nèi)，如標本數(shù)量多，推薦使用排槍加樣。 l 在配制標準品、檢測溶液工作液時，請以相應(yīng)的稀釋液配制，不能混淆。 l 如標本中待測物質(zhì)含量過高，請先稀釋后再測定，計算時請zui后乘以稀釋倍數(shù)。 |
